Nghiên cứu phương pháp xác định vi khuẩn Bacillus thuringiensis trong một số chế phẩm vi link vào dafabet

Nghiên cứu phương pháp xác định vi khuẩnBacillus thuringiensistrong một số chế phẩm vi link vào dafabet

TS. Ninh Thị Thảo^1*, TS. Nông Thị Huệ¹, Phạm Văn Tuấn², Nguyễn Thị Quỳnh Anh², Đỗ Đức Mạnh²

¹GVHD,²Lớp K62CNSHE, Khoa CNSH,^*Liên hệ

Đặt vấn đề

Tại Việt Nam, số lượng các thuốc bảo vệ thực vật (BVTV) link vào dafabet học tăng nhanh nhưng doanh số chỉ đạt dưới 10% tổng doanh số thuốc BVTV (https://nongnghiep.vn/2020), trong khi đó lượng thuốc  trừ sâu và trừ bệnh mỗi năm nước ta sử dụng vẫn rất lớn khoảng 16.400 tấn (https://danviet.vn/2018). Chính vì điều đó việc đẩy mạnh sản xuất và sử dụng thuốc BVTV link vào dafabet học nhằm dần thay thế các sản phẩm thuốc BVTV hóa học là rất cần thiết. Cùng với đó là việc kiểm soát chất lượng sản phẩm để tránh sản phẩm thuốc BVTV giả, kém chất lượng là công việc không kém phần quan trọng.

Bacillus thuringiensis(Bt) là vi khuẩn gram dương, có khả năng tạo bào tử, mang các gencrymã hóa các protein tinh thể độc (protein cry) có hiệu quả phòng trừ đối với nhiều loại sâu bệnh hại trên cây trồng (Schnepf & cs., 1998). Do vậy vi khuẩnBtđã và đang được ứng dụng rộng rãi trong việc sản xuất phân bón vi link vào dafabet. Chế phẩm link vào dafabet học đầu tiên có nguồn gốc từ các chủngBttừ đó đến nay nó vẫn luôn là sản phẩm được sản xuất nhiều nhất và sử dụng phổ biến nhất.

Ở Việt Nam, chế phẩmBtđã được nghiên cứu từ năm 1971. Tuy nhiên, các tiêu chuẩn cơ sở hay các tiêu chuẩn quốc gia đã ban hành không thể áp dụng để đánh giá định tính và định lượng vi khuẩnBttrong phân bón vi link vào dafabet. Chính vì vậy, việc xây dựng được phương pháp để phát hiện và định lượng được vi khuẩnBttrong các mẫu phân bón vi link vào dafabet trong điều kiện Việt Nam là cần thiết.

Kết quả và thảo luận

Phân lập các chủng vi khuẩnBtgiả định trong 6 chế phẩm link vào dafabet học

Để phân lập các chủng vi khuẩnBttrong các chế phẩm link vào dafabet học, các mẫu chế phẩm được hoà tan trong môi trường LB lỏng được đệm bằng acetate 0,25M theo tỉ lệ 1:19 đến 1:99 tuỳ theo từng chế phẩm và ủ trong 5 phút ở 80°C nhằm diệt các tế bào link vào dafabet dưỡng và các tế bào không link vào dafabet bào tử. Sau đó mẫu thử được pha loãng đến nồng độ 10^-4và nuôi cấy 10 ml trên môi trường thạch LB ở 30°C trong 18-24h. Sau thời gian nuôi cấy, đếm các khuẩn lạc là các vi khuẩnBtđiển hình hoặc giả định nghi ngờ, gọi chung là khuẩn lạc giả định. Khuẩn lạcBtđiển hình trên môi trường LB là các khuẩn lạc có dạng hình tròn hoặc dẹt, màu trắng sữa, kích thước khuẩn lạc 1 mm – 7 mm. Sau đó các khuẩn lạc nghi ngờ là khuẩn lạcBtđược nuôi cấy trên môi trường thạch T3 ở nhiệt độ 30°C trong 48h. Các khuẩn lạc mọc trên môi trường T3 được quan sát hình thái khuẩn lạc và so sánh với chủng vi khuẩnBtchuẩn (4T1).

Bảng 1. Kết quả phân lập và đặc điểm hình thái khuẩn lạc của 6 chủng khuẩnBtphân lập từ 6 chế phẩm vi link vào dafabet trên môi trường T3

STT	Chủng phân lập	Hình thái khuẩn lạc trên môi trường T3	Mô tả khuẩn lạc
1	4T1 (Chủng chuẩn)		Khuẩn lạc có hình tròn, kích thước 1-2 mm, màu trắng sữa, có tâm dày, viền mỏng.
2	S (Siamb)		Khuẩn lạc có hình tròn, kích thước 2-3 mm, màu trắng sữa, có tâm, bề mặt gồ ghề.
3	T1 (Thằn lằn chúa thần tốc)		Khuẩn lạc có hình tròn, kích thước 1-2 mm, màu trắng sữa, viền nhăn dày.
4	DT (Delfin ®WG)		Khuẩn lạc có hình tròn, kích thước 3-4 mm, màu trắng sữa, bề mặt nhẵn, có tâm dày viền mỏng.
5	V (VBTusa WP)		Khuẩn lạc có hình tròn, kích thước 2-3 mm, màu trắng sữa, viền nhăn, có tâm dày viền mỏng.
6	E (Enasin)		Khuẩn lạc có hình tròn, kích thước 2-3 mm, có tâm dày viền mỏng.
7	B (BIO –B)		Khuẩn lạc có hình tròn, kích thước 2-3 mm, viền nhăn.

Định danh các chủng vi khuẩnBtgiả định thông qua hình thái và hóa link vào dafabet

Các khuẩn lạc mọc trên môi trường T3 sau đó được nhuộm soi quan sát hình dạng tế bào, bào tử, tinh thể và thử tính chất link vào dafabet hoá gồm phản ứng lecithinase, phản ứng catalase và phản ứng sucrose. Kết quả đặc điểm hình thái tế bào và thử tính chất link vào dafabet hoá được thể hiện ở bảng 2 và bảng 3.

Bảng 2. Đặc điểm hình thái tế bào của 6 chủng khuẩnBtphân lập

STT	Chủng phân lập	Hình ảnh tế bào nhuộm fuchsin	Mô tả tế bào
1	4T1 (Chủng chuẩn)		Hình ảnh nhuộm tế bào thể hiện tất cả các chủng có hình thái giống chủngBtchuẩn (4T1), khuẩn lạc hình que, đầu hơi tù xếp thành chuỗi hoặc riêng lẻ; bào tử dạng hình trứng chính tâm, màu xanh lục; tế bào chất bắt màu đỏ hồng.
2	S (Siamb)
3	T1 (Thằn lằn chúa thần tốc)
4	DT (Delfin ®WG)
5	V (VBTusa WP)
6	E (Enasin)
7	B (BIO –B)

Bảng 3. Kết quả thử nghiệm hóa link vào dafabet của của 6 chủng khuẩnBtphân lập

Chú thích: (+): Dương tính , (-) Âm tính

Hình 1. Kết quả thử nghiệm lecithinase. (A) chủng V, (B) chủng DT, (C) chủng S, (D) chủng chuẩn 4T1. Các khuẩn lạcBtgiả định trên môi trường T3 được nuôi cấy chấm khuẩn lạc trên môi trường thạch MYP và nuôi cấy ở 37°C trong 18-24h.

Hình 2. Kết quả thử nghiệm catalase. (A) chủng V, (B) chủng DT, (C) chủng S, (D) chủng chuẩn 4T1. Các khuẩn lạcBtgiả định trên môi trường T3 được chấm lên lam kính, sau đó nhỏ 2 giọt H₂O₂3% phủ lên vi khuẩn và quan sát sự tạo thành bọt khí.

Hình 3. Kết quả thử nghiệm trên môi trường lên men sucrose. (A) Đối chứng âm, (B) chủng chuẩn 4T1 (C) chủng phân lập V. Lấy các khuẩn lạc mọc trên T3 cho vào dung dịch sucrose 10% vô trùng có bổ sung đỏ phenol và quan sát kết quả.

Xác định khả năng link vào dafabet tinh thể độc và bào tử của các chủngBtgiả định

Để kiểm tra khả năng link vào dafabet tinh thể độc và khả năng link vào dafabet bào tử các khuẩn lạc trên môi trường T3 sau khi nuôi trong 48-72h được phết lên lam kính có chứa 1 giọt nước vô trùng sau đó khuấy đều và hơ trên đèn cồn đến khi khô. Sau đó, nhỏ 1-2 giọt dung dịch Coomassie brilliant blue, để trong 3 phút sau đó rửa sạch bằng nước cất và quan sát dưới kính hiển vi. Kết quả hình ảnh bào tử và tinh thể của các chủng được thể hiện ở bảng 4.

Bảng 4. Hình ảnh bào tử và tinh thể của một số chủng

Chủng	Hình ảnh nhuộm tinh thể, bào tử	Mô tả tinh thể và bào tử
Chủng chuẩn 4T1		Các chủng vi khuẩn phân lập đều thể hiện đặc điểm tinh thể và bào tử giống với chủngBtchuẩn, gồm: - Tinh thể có hình thoi, tròn, lệch tâm và nhiều hình dạng khác. Bắt màu toàn phần. - Bào tử hình trụ hoặc hình trứng, một đầu bắt màu một đầu không bắt màu kể cả là nội hay ngoại bào tử. - Tế bào bắt màu toàn phần, hình trụ.
V
DT
S
T1
E
B

Như vậy có thể thấy các chủng vi khuẩnBtgiả định phân lập từ các chế phẩm vi link vào dafabet có đặc điểm khuẩn lạc, đặc điểm tế bào, phản ứng hoá link vào dafabet, khả năng link vào dafabet bào tử và tinh thể tương đồng với chủng vi khuẩnBtchuẩn. Đây cũng là những đặc điểm khác biệt đặc trưng của vi khuẩnBtvới các loài vi khuẩn khác có cùng hoạt tính hóa link vào dafabet trong chiBacillus(Baumann và cs., 1984; Claus & Berkley, 1986; Slepecky & Hemphill, 1992; Carlson & Kolstø, 1993; Hansen và cs., 1998). Do vậy có thể bước đầu khẳng định các chủng vi khuẩn phân lập giả định là chủng vi khuẩnBt.

Kiểm tra sự có mặt của các gen đặc hiệu cho vi khuẩnBtở các chủng phân lập bằng phương pháp PCR

Để khẳng định ở mức độ phân tử các chủng vi khuẩn phân lập là các chủng vi khuẩnBt, chúng tôi kiểm tra sự có mặt của một số gen đặc trưng cho vi khuẩnBtgồm genGroEL, GyrB, XREvà genCry2bằng phương pháp PCR (Chelliah và cs., 2019).

Hình 4. Kết quả điện di sản phẩm PCR với cặp mồi đặc hiệu cho genCry2(kích thước đoạn băng đặc hiệu 700bp). Đối chứng âm là nước cất và các chủng ATCC79530 (Bacillus subtilis), NT 1.8 (B. amyloliquefaciens), ATCC 25923 (S. aureus), ATCC 85922 (E.coli), đối chứng dương (chủng chuẩn): 4T1, 4T4, 4D4. Và các chủng phân lập là V, E, S, B, T1, DT. Thang chuẩn DNA 100bp.

Hình 5. Kết quả điện di sản phẩm PCR với cặp mồi đặc hiệu cho genGroEL(kích thước đoạn băng đặc hiệu 600bp).

Hình 6. Kết quả điện di sản phẩm PCR với cặp mồi đặc hiệu cho genGryb(kích thước đoạn băng đặc hiệu 221bp).

Hình 7. Kết quả điện di sản phẩm PCR với cặp mồi đặc hiệu cho genXRE(kích thước đoạn băng đặc hiệu 246bp)   .

Kết quả phản ứng PCR với các cặp mồi đặc hiệu nhân bản các gen đặc trưng của vi khuẩnBtcho thấy các chủng vi khuẩn phân lập giả định đều mang các vạch băng có kích thước bằng kích thước xuất hiện ở chủng vi khuẩnBtchuẩn. Như vậy, kết hợp kết quả phân tích đặc điểm hình thái, link vào dafabet hoá và phân tích sự có mặt của các gen đặc trưng của vi khuẩnBtbằng phương pháp PCR có thể khẳng định các chủng vi khuẩn phân lập là các chủng vi khuẩnBt.

Tài liệu tham khảo

1.      TCVN 12105:2018 Phân bón vi link vào dafabet vật - lấy mẫu.

2.      TCVN 6404:2016 (ISO 7218:2007 with amendment 1:2013) Vi link vào dafabet vật trong thực phẩm và thức ăn chăn nuôi - Yêu cầu chung và hướng dẫn kiểm tra vi link vào dafabet vật.

3.TCCS 09: 2020/BVTV Thuốc bảo vệ thực vật - phương pháp xác định vi khuẩnBacillus thuringiensis.

4.      Tiêu chuẩn quốc gia TCVN 11133:2015 (ISO 22119:2011) về Vi link vào dafabet vật trong thực phẩm, thức ăn chăn nuôi - Phản ứng chuỗi polymerase real-time (pcr real-time) để phát hiện vi link vào dafabet vật gây bệnh từ thực phẩm - Định nghĩa và yêu cầu chung Vi link vào dafabet vật trong thực phẩm, thức ăn chăn nuôi. Phản ứng chuỗi polymerase real-time (pcr real-time) để phát hiện vi link vào dafabet vật gây bệnh từ thực phẩm.

5.      TCVN 7682 (ISO 20838), Vi link vào dafabet vật trong thực phẩm và thức ăn chăn nuôi – Phản ứng chuỗi polymeraza (PCR) để phát hiện link vào dafabet vật gây bệnh từ thực phẩm – Yêu cầu về khuếch đại và phát hiện đối với các phương pháp định tính.

6.      ISO 22174, Microbiology of food and animal feeding stuffs – Polymerase chain reaction (PCR) for the detection of food-borne pathogens – General requirements and definitions (Vi link vào dafabet vật trong thực phẩm và thức ăn chăn nuôi – Phản ứng chuỗi trùng hợp để phát hiện link vào dafabet vật gây bệnh từ thực phẩm – Yêu cầu chung và định nghĩa).

7.      Tiêu chuẩn quốc gia TCVN 10781:2015 (ISO/TS 13136:2012), vi link vào dafabet vật trong thực phẩm và thức ăn chăn nuôi – phương pháp phát hiện vi link vào dafabet vật gây bệnh trong thực phẩm bằng phản ứng chuỗi polymerase (PCR) thời gian thực – phát hiện escherichia coli link vào dafabet độc tố shiga (stec) và các định các nhóm huyết thanh O157, O111, O26, O103 và O145.

8.      Alaeddino~lu FASaNG (1998) A rapid and simple method for staining of the crystal protein ofBacillus thuringiensis. Journal of Industrial Microbiology 3: 227-229.

9.      Chang, Y.-H., Shangkuan, Y.-H., Lin, H.-C., & Liu, H.-W. (2003). PCR Assay of the groEL Gene for Detection and Differentiation of Bacillus cereus Group Cells.Applied and environmental microbiology, 69(8), 4502–4510.

10.  Chelliah, R., Wei, S., Park, B. J., Rubab, M., Banan-Mwine Dalirii, E., Barathikannan, K., Jin, Y. G., & Oh, D. H. (2019). Whole genome sequence of Bacillus thuringiensis ATCC 10792 and improved discrimination of Bacillus thuringiensis from Bacillus cereus group based on novel biomarkers.Microbial Pathogenesis, 129, 284–297.

11.  Dzieciol, M., Fricker, M., Wagner, M., Hein, I., & Ehling-Schulz, M. (2013). A novel diagnostic real-time PCR assay for quantification and differentiation of emetic and non-emetic Bacillus cereus.Food Control, 32(1), 176–185.

12.  Rebecca LH, Zothansanga Singh BP, Gurusubramanian G, Senthil NK. DNA finger printing ofBacillus thuringiensisbased on repetitive DNA sequences using ERIC-PCR.Sci Vis.2011;11(3):147–154.

13.  Travers RS, Martin PA, Reichelderfer CF (1987) Selective Process for Efficient Isolation of Soil Bacillus spp. Appl Environ Microbiol 53: 1263-6

14.  Thiery I and Frachon E (1997). Bacteria: identification, isolation, culture and preservation of entomopathogenic bacteria. In Lawrence A Lacey. Manual of Techniques in Insect Pathology, Cap. III-1, Biological Techniques Series, Academic Press, London, p. 55-75.